Материал: Методы исследования в медицинской бактериологии

Внимание! Если размещение файла нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам

101

ультрафиолетовом облучении. Хромогенные питательные среды используют уже при первичном посеве исследуемого материала для выделения чистой культуры. Поэтому идентификация культуры возможна уже в течение первых суток исследования. Использование хромогенных питательных сред ускоряет процесс идентификации бактерий до 24 часов при первичном посеве до рода и вида.

Основными производителями хромогенных питательных сред являются

компании HiMedia, CHROMagar,ИспользованиеMerck, Oxoid. Разработ ые хромогенные питательные среды предназначены для быстрого бнаружения сследуемом

материале кишечной палочки, сальмонелл, энтерококков, стафилококковхро,

клостридий, синегнойной палочки, устойчивого к метициллину стафилококка и

других бактерий. На рисунке 93 представлс селективнымивариант использования хромогенной питательной среды для выявления кишечной па очки, лебсиеллы и протея.

Рисунок 93 – Использование хромогенных сред для первичной идентификации

бактерий. Заимствовано из Интернет-ресурсов. Идентификация

Лидером производителеймикробоввысококачественныхдо рода, хромогенных сред для микробиологических исследований является компания HiMedia (Индия). Эта компания поставляет навидарынок хромогенные среды для выделения в течение 24 часов целого ряда микроорганизмов: Escherichia coli и других колиформных

бактерий,

сальмонелл,

энтерогеморрагических

эшерихий,

энтерококков,

Staphylococcus aureus, клостридий, синегнойной палочки, Candida

albicans и др.

(таблица 14).

 

 

 

 

 

 

Таблица 14 – Примеры выпускаемых компанией HiMedia хромогенных сред

 

 

 

 

 

 

Обозначение

 

 

Наименование

 

Назначение

М1078/М1082

 

Salmonella Differential Agar/ Modified

 

Для идентификации и

 

 

102

 

(RajHans Medium) Дифференциальный агар

дифференциации сальмонелл

 

для сальмонелл

от других энтеробактерий,

 

Дифференциальный агар для сальмонелл,

особенно протеев

 

модифицированный (среда Радж-Ханса)

 

М1293

HiCrome ECC Agar

Для предварительной

 

Хромогенный агар ECC

идентификации Escherichia coli

 

 

и других колиформных

 

 

бактерий в пищевых продуктах

 

 

и в пробах из окружающей

 

 

среды

М1294

HiCrome ECC Selective Agar Base

Для обнаружения Escherichia

 

Основа хромогенного селективного агара

coli и других колиформных

 

ECC

бактерий в пищевых продуктах

 

 

и пробах воды

М1295/

HiCrome E. coli Agar

Для обнаружения и подсчета

М12951

Хромогенный агар для обнаружения и

Escherichia coli в пищевых

 

подсчета E. coli

продуктах без дальнейшего

 

 

подтверждения на мембранных

 

 

фильтрах или реактивом на

 

 

индол

Компания Merck выпускает хромогенные питательные среды для выявления сальмонелл, листерий, кишечной палочки и колиформных бактерий.

Агаризованную питательную среду асептически разливают в чашки Петри в расплавленном состоянии при температуре 45-50°С. Среду, разлитую в чашки Петри, больше не стерилизуют.

5.2.2. Системы создания специальных атмосферных условий культивирования

Для культивирования некоторых бактерий (облигатных анаэробов, микроаэрофилов, капнофилов) необходимо создать специальные атмосферные условия. Посевы анаэробов культивируют в атмосфере с содержанием кислорода не более 0,1%. Инкубирование посевов анаэробных бактерий проводят в термостатах в герметически закрытых емкостях – эксикаторах, микроанаэростатах, анаэробных пакетах или в специальных анаэробных камерах, снабженных термостатом.

Просто устроенные системы для культивирования анаэробных бактерий представлены на рисунке 94.

103

а б в Рисунок 94 – Системы для выращивания анаэробных бактерий: а – эксикатор, б –

анаэростат, в – использование стеклянной емкости и зажженной свечи. Заимствовано из Интернет-ресурсов.

Для поглощения кислорода в замкнутой воздушной среде таких систем используют раствор пирогаллола, гидросульфит натрия, для получения углекислого газа применяют смесь лимонной или серной кислоты с бикарбонатом натрия. Например, при использовании эксикатора на дно помещают открытую чашку Петри с химическими веществами, связывающими кислород (например, пирогаллол с едким натром). Сверху на специальный выступ эксикатора ставят фарфоровую решетку, а на нее – пробирки или чашки с посевами. Крышку эксикатора плотно закрывают. Для герметичности края эксикатора смазывают вазелином. После этого эксикатор помещают в термостат.

В настоящее время для создания анаэробных или микроаэрофильных условий в основном применяют герметичные контейнеры и специальные газогенерирующие пакеты. Производителями подобных герметичных контейнеров и газогенерирующих пакетов являются специализированные компании.

Контейнеры представляют собой пластиковые герметически закрывающиеся емкости, в которых сохраняется создаваемая с помощью генерирующих пакетов газовая атмосфера (рисунок 95).

Рисунок 95 – Герметичные контейнеры для создания специальной атмосферы. Заимствовано из Интернет-ресурсов.

104

Газогенерирующие пакеты содержат химические соединения, способные создавать определенную атмосферу (таблица 15). В газогенерирующих системах водород генерируется таблетками боргидрида натрия, углекислый газ вырабатывается при взаимодействии лимонной кислоты с бикарбонатом натрия и т.д.

Таблица 15 – Примеры газогенерирующих пакетов фирмы GasPak для создания специальных атмосферных условий для культивирования бактерий

Тип пакета

Создаваемая атмосфера

Тип микроорганизмов

GasPak

17-19% О2

Аэробные капнофилы

 

5-10% СО2

 

CampyPak

5-8% О2

Микроаэрофилы

 

5-10% СО2

 

GasPak Н2/СО2

<1,2% О2

Строгие анаэробы

 

5-10% СО2

 

Внешний вид газогенерирующих пакетов представлен на рисунке 96.

Рисунок 96 – Газогенерирующие пакеты. Заимствовано из Интернет-ресурсов.

Анаэробная камера (рисунок 97) представляет собой герметичный бокс, оснащенный термостатом, системой подачи “анаэробного газа”. “Анаэробный газ” может быть трехкомпонентным (смесь азота, углекислого газа и водорода) или двухкомпонентным (смесь азота и водорода). Все манипуляции в такой камере выполняются в бескислородных условиях. Вместимость анаэробной камеры – до 200 чашек Петри. В основном такими камерами оснащаются референс-лаборатории.

105

Рисунок 97 – Анаэробная камера. Заимствовано из Интернет-ресурсов.

Микроанаэростат (рисунок 98) представляет собой герметично закрывающуюся емкость объемом 3-7 л и вместимостью 10-12 чашек Петри. Бескислородные условия в микроанаэростате создаются путем создания в нем вакуума и последующего заполнения “анаэробным газом” или путем химического связывания кислорода газогенерирующими системами. Создание бескислородных условий в микроанаэростатах контролируется с помощью индикаторной тестполоски, импрегнированной метиленовой синью, которая обесцвечивается в случае образования бескислородной атмосферы.

Рисунок 98 – Микроанаэростаты. Заимствовано из Интернет-ресурсов.

В лабораторной практике часто используются СО2-термостаты, позволяющие создавать атмосферу углекислого газа (рисунок 99).

Источник: https://studfile.net/preview/16459946/