101
ультрафиолетовом облучении. Хромогенные питательные среды используют уже при первичном посеве исследуемого материала для выделения чистой культуры. Поэтому идентификация культуры возможна уже в течение первых суток исследования. Использование хромогенных питательных сред ускоряет процесс идентификации бактерий до 24 часов при первичном посеве до рода и вида.
Основными производителями хромогенных питательных сред являются
компании HiMedia, CHROMagar,ИспользованиеMerck, Oxoid. Разработ ые хромогенные питательные среды предназначены для быстрого бнаружения сследуемом
материале кишечной палочки, сальмонелл, энтерококков, стафилококковхро,
клостридий, синегнойной палочки, устойчивого к метициллину стафилококка и
других бактерий. На рисунке 93 представлс селективнымивариант использования хромогенной питательной среды для выявления кишечной па очки, лебсиеллы и протея.
Рисунок 93 – Использование хромогенных сред для первичной идентификации
бактерий. Заимствовано из Интернет-ресурсов. Идентификация
Лидером производителеймикробоввысококачественныхдо рода, хромогенных сред для микробиологических исследований является компания HiMedia (Индия). Эта компания поставляет навидарынок хромогенные среды для выделения в течение 24 часов целого ряда микроорганизмов: Escherichia coli и других колиформных
бактерий, |
сальмонелл, |
энтерогеморрагических |
эшерихий, |
энтерококков, |
||
Staphylococcus aureus, клостридий, синегнойной палочки, Candida |
albicans и др. |
|||||
(таблица 14). |
|
|
|
|
|
|
Таблица 14 – Примеры выпускаемых компанией HiMedia хромогенных сред |
||||||
|
|
|
|
|
|
|
Обозначение |
|
|
Наименование |
|
Назначение |
|
М1078/М1082 |
|
Salmonella Differential Agar/ Modified |
|
Для идентификации и |
||
|
|
102 |
|
(RajHans Medium) Дифференциальный агар |
дифференциации сальмонелл |
|
для сальмонелл |
от других энтеробактерий, |
|
Дифференциальный агар для сальмонелл, |
особенно протеев |
|
модифицированный (среда Радж-Ханса) |
|
М1293 |
HiCrome ECC Agar |
Для предварительной |
|
Хромогенный агар ECC |
идентификации Escherichia coli |
|
|
и других колиформных |
|
|
бактерий в пищевых продуктах |
|
|
и в пробах из окружающей |
|
|
среды |
М1294 |
HiCrome ECC Selective Agar Base |
Для обнаружения Escherichia |
|
Основа хромогенного селективного агара |
coli и других колиформных |
|
ECC |
бактерий в пищевых продуктах |
|
|
и пробах воды |
М1295/ |
HiCrome E. coli Agar |
Для обнаружения и подсчета |
М12951 |
Хромогенный агар для обнаружения и |
Escherichia coli в пищевых |
|
подсчета E. coli |
продуктах без дальнейшего |
|
|
подтверждения на мембранных |
|
|
фильтрах или реактивом на |
|
|
индол |
Компания Merck выпускает хромогенные питательные среды для выявления сальмонелл, листерий, кишечной палочки и колиформных бактерий.
Агаризованную питательную среду асептически разливают в чашки Петри в расплавленном состоянии при температуре 45-50°С. Среду, разлитую в чашки Петри, больше не стерилизуют.
5.2.2. Системы создания специальных атмосферных условий культивирования
Для культивирования некоторых бактерий (облигатных анаэробов, микроаэрофилов, капнофилов) необходимо создать специальные атмосферные условия. Посевы анаэробов культивируют в атмосфере с содержанием кислорода не более 0,1%. Инкубирование посевов анаэробных бактерий проводят в термостатах в герметически закрытых емкостях – эксикаторах, микроанаэростатах, анаэробных пакетах или в специальных анаэробных камерах, снабженных термостатом.
Просто устроенные системы для культивирования анаэробных бактерий представлены на рисунке 94.
103
а б в Рисунок 94 – Системы для выращивания анаэробных бактерий: а – эксикатор, б –
анаэростат, в – использование стеклянной емкости и зажженной свечи. Заимствовано из Интернет-ресурсов.
Для поглощения кислорода в замкнутой воздушной среде таких систем используют раствор пирогаллола, гидросульфит натрия, для получения углекислого газа применяют смесь лимонной или серной кислоты с бикарбонатом натрия. Например, при использовании эксикатора на дно помещают открытую чашку Петри с химическими веществами, связывающими кислород (например, пирогаллол с едким натром). Сверху на специальный выступ эксикатора ставят фарфоровую решетку, а на нее – пробирки или чашки с посевами. Крышку эксикатора плотно закрывают. Для герметичности края эксикатора смазывают вазелином. После этого эксикатор помещают в термостат.
В настоящее время для создания анаэробных или микроаэрофильных условий в основном применяют герметичные контейнеры и специальные газогенерирующие пакеты. Производителями подобных герметичных контейнеров и газогенерирующих пакетов являются специализированные компании.
Контейнеры представляют собой пластиковые герметически закрывающиеся емкости, в которых сохраняется создаваемая с помощью генерирующих пакетов газовая атмосфера (рисунок 95).
Рисунок 95 – Герметичные контейнеры для создания специальной атмосферы. Заимствовано из Интернет-ресурсов.
104
Газогенерирующие пакеты содержат химические соединения, способные создавать определенную атмосферу (таблица 15). В газогенерирующих системах водород генерируется таблетками боргидрида натрия, углекислый газ вырабатывается при взаимодействии лимонной кислоты с бикарбонатом натрия и т.д.
Таблица 15 – Примеры газогенерирующих пакетов фирмы GasPak для создания специальных атмосферных условий для культивирования бактерий
Тип пакета |
Создаваемая атмосфера |
Тип микроорганизмов |
GasPak |
17-19% О2 |
Аэробные капнофилы |
|
5-10% СО2 |
|
CampyPak |
5-8% О2 |
Микроаэрофилы |
|
5-10% СО2 |
|
GasPak Н2/СО2 |
<1,2% О2 |
Строгие анаэробы |
|
5-10% СО2 |
|
Внешний вид газогенерирующих пакетов представлен на рисунке 96.
Рисунок 96 – Газогенерирующие пакеты. Заимствовано из Интернет-ресурсов.
Анаэробная камера (рисунок 97) представляет собой герметичный бокс, оснащенный термостатом, системой подачи “анаэробного газа”. “Анаэробный газ” может быть трехкомпонентным (смесь азота, углекислого газа и водорода) или двухкомпонентным (смесь азота и водорода). Все манипуляции в такой камере выполняются в бескислородных условиях. Вместимость анаэробной камеры – до 200 чашек Петри. В основном такими камерами оснащаются референс-лаборатории.
105
Рисунок 97 – Анаэробная камера. Заимствовано из Интернет-ресурсов.
Микроанаэростат (рисунок 98) представляет собой герметично закрывающуюся емкость объемом 3-7 л и вместимостью 10-12 чашек Петри. Бескислородные условия в микроанаэростате создаются путем создания в нем вакуума и последующего заполнения “анаэробным газом” или путем химического связывания кислорода газогенерирующими системами. Создание бескислородных условий в микроанаэростатах контролируется с помощью индикаторной тестполоски, импрегнированной метиленовой синью, которая обесцвечивается в случае образования бескислородной атмосферы.
Рисунок 98 – Микроанаэростаты. Заимствовано из Интернет-ресурсов.
В лабораторной практике часто используются СО2-термостаты, позволяющие создавать атмосферу углекислого газа (рисунок 99).