|
Наименование параметра
|
Значение
|
|
Наименьший предел
взвешивания, г
|
0,01
|
|
Наибольший предел
взвешивания, г
|
60
|
|
Дискретность отсчета, мг
|
0,1
|
|
Время установления
показаний, не более, с
|
2,5
|
|
Рабочий диапазон температур,
°С
|
5…40
|
|
Рекомендованный
калибровочный вес, г
|
50
|
2.5
Приготовление растворов
Растворы были приготовлены путем разведения сухой порошкообразной
компоненты в растворителе. В качестве растворителя выступала дистиллированная
вода. Необходимая масса компоненты рассчитывались по формуле:
(2.1)
где 
- молекулярный вес вещества;
с - необходимая концентрация раствора;
- объем, на который разводится раствор.
Для гемоглобина μ=66000 г/моль, для родамина 6G
μ=450,5 г/моль, для
эозина G
μ=692 г/моль, для
эритрозина μ=879,4 г/моль.
Необходимые массы веществ взвешивались на аналитических лабораторных
весах серии HR.
2.6 Методика
заливки пленок
Для проведения кинетического эксперимента с откачкой воздуха из
окрашенных пористых образцов с гемоглобином потребовалось приготовить пленки с
раздробленными пористыми образцами.
В качестве подложки для пленок использовались стекла для микроскопа,
предварительно приведенные к размеру 2,5х2 см. Они очищались от различных
органических и неорганических загрязнений следующим образом.
Стеклянная подложка тщательно промываемся в проточной воде. После этого
подложка промываемся дистиллированной водой. Очищенная таким образом подложка
помещается на несколько минут в ёмкость с этиловым спиртом или ацетоном для
лучшего очищения ее поверхности (обезжиривания). После чего промывается
дистиллированной водой.
По завершении процесса очистки подложка высушивалась потоком теплого воздуха.
Далее на подложку наносился слой (около 1 мм) раздробленных пористых
образцов (силикагеля), предварительно окрашенных в растворе красителя и
гемоглобина. Для закрепления слоя раздробленных образцов наносился 1% раствор
ПВБ.
2.7
Проведение экспериментов
На спектрофотометре Т70 были исследованы жидкие растворы гемоглобина
(концентрация С=10-7 моль/л), органических красителей родамина 6G (концентрацией С=10-6
моль/л), эозина G (концентрацией
С=10-6 моль/л) и эритрозина (концентрацией С=10-6 моль/л)
и смеси этих красителей с гемоглобином в указанных концентрациях. По сдвигу
спектров поглощения можно судить о характере взаимодействия молекул того или
иного красителя с молекулами гемоглобина.
Далее было решено провести серию экспериментов на люминесцентной
установке, изображенной на рисунке 2.1. Вакуумный насос в этой серии
экспериментов не использовался. Были использованы следующие растворы красителей
с гемоглобином: родамин 6G с
гемоглобином (10-4 моль/л и 10-5 моль/л соответственно),
эритрозин с гемоглобином (10-4 моль/л и 10-5 моль/л
соответственно) и эозин G с
гемоглобином (10-4 моль/л и 10-5 моль/л соответственно).
Была исследована зависимость люминесценции красителей от относительного
содержания красителя и гемоглобина в растворе. Исследуемый раствор помещался в
кварцевую кювету, закрепляемую на вращающемся основании. Воздействие лазерного
излучения на кювету с раствором приводило к возбуждению молекул красителя.
Сигнал люминесценции красителя, пройдя через монохроматор, попадал в ФЭУ и,
пройдя через ряд преобразователей, выводился на мониторе компьютера.
Компьютером регистрировалась усредненная кривая. Проводилось снятие серии
сигналов с различными красителями, указанными выше, для усреднения результата.
Для каждого раствора снималось от трех до семи кривых сигнала люминесценции.
Далее данные усреднялись, и полученные значения параметров обрабатывались в
пакете Origin. По прошествии 24 часов данный
эксперимент повторялся с этими же растворами красителей и гемоглобина для
выявления воздействия кислорода и оседании гемоглобина на молекулах красителя.
В дальнейшем были проведены эксперименты по исследованию зависимости
люминесценции красителей в пористых средах (силикагели), окрашенных раствором
красителей и гемоглобина. Проведены 2 серии экспериментов: с полностью
высушенными пористыми средами и чуть влажными, также в эксперименте участвовало
2 вида лазеров: синий и зеленый, для выявления степени точности полученных
результатов. Эксперимент проводился на люминесцентной установке с возможностью
откачки воздуха из кюветы с образцом, изображенной на рисунке 14. Концентрация
красителя составляла 10-3, 10-4 моль/л, а концентрация
гемоглобина 10-5 моль/л.
Для снижения концентрации кислорода в гемоглобине, образцы помещались в
вакуумируемую кювету. С помощью вакуумного насоса давление в кювете понижалось
до 0,8 мбар. Дело в том, что, согласно теории, при снижении давления над
раствором гемоглобина, происходит его (гемоглобина) дезоксигенация, то есть
молекулы кислорода, связанные гемоглобином, покидают его. Снимались серии
кривых без откачки воздуха из кюветы и с откачкой.
Результаты экспериментов представлены в главе 3.
3. Результаты
экспериментов
3.1
Абсорбционный эксперимент
Как уже отмечалось в главе 2, в рамках данной дипломной работы был
проведен эксперимент по исследованию взаимодействия молекул красителя с
молекулами гемоглобина. Эксперимент проводился методом абсорбционной
спектроскопии. Концентрация гемоглобина в исследуемых растворах составляла 10-7
моль/л, концентрации красителей в растворах составляли 10-6 моль/л.
Исследования проводились на спектрофотометре Т70.
Рисунок 19 - Спектр поглощения водного раствора гемоглобина (концентрации
10-7 моль/л) при н.у.
На рисунке 19 представлен спектр поглощения водного раствора гемоглобина
концентрации С=10-7 моль/л. На длине волны, равной 405 нм, имеется
характерный для гемоглобина пик поглощения.
Было выдвинуто предположение, что в результате высаживание молекул
красителя на молекулу гемоглобина в растворе, содержащем гемоглобин и
краситель, произойдет изменение спектра поглощения красителя, а именно сдвиг
максимума поглощения.
Рисунок 20 - Спектр поглощения чистого раствора родамина 6G
Рисунок 21 - Спектр поглощения раствора родамина 6G с гемоглобином
Как видно из спектров поглощения на рисунке 20 и 21, пик поглощения
родамина 6G при добавлении в раствор гемоглобина
не смещается, уменьшается интенсивность поглощения за счет присутствия
гемоглобина. На графике виден пик гемоглобина на λ=405 нм.
Рисунок 22 - Спектр поглощения чистого раствора эозина G
Рисунок 23 - Спектр поглощения раствора эозина G с гемоглобином
Проводя анализ рисунков 22 и 23 сравним спектр поглощения чистого
раствора эозина G и раствора
эозина G при добавлении в него гемоглобина.
Пик поглощения эозина G при
добавлении в раствор гемоглобина не смещается, уменьшается интенсивность
поглощения за счет присутствия гемоглобина. На графике также виден пик
гемоглобина на λ=405 нм.
Рисунок 24 - Спектр поглощения чистого раствора эритрозина
Рисунок 25 - Спектр поглощения раствора эритрозина с гемоглобином
Из анализа рисунков 24 и 25 также видно, что пик поглощения раствора
эритрозина, как и в случае с родамином 6G, уменьшается при добавлении в раствор гемоглобина, смещение
не происходит, а интенсивность поглощения уменьшается за счет присутствия
гемоглобина.
Абсорбционный эксперимент определяет характер взаимодействия красителей с
гемоглобином. У всех красителей при добавлении в раствор гемоглобина снижается
интенсивность поглощения, за счет присутствия гемоглобина.
3.2
Люминесцентный эксперимент с жидкими растворами красителей и гемоглобина
Так как результаты абсорбционного эксперимента не дали ответа на вопрос о
взаимодействии красителей с гемоглобином, было решено провести серию
люминесцентных экспериментов с жидкими растворами красителей с добавлением
гемоглобина с разницей в проведении экспериментов в 24 часа.
Исследования проводились на установке, описанной в 2.1, без участия
вакуумного насоса. Проводился эксперимент с растворами красителей с
концентрациями: родамин 6G с
гемоглобином (10-4 моль/л и 10-5 моль/л соответственно),
эритрозин с гемоглобином (10-4 моль/л и 10-5 моль/л
соответственно) и эозин G с
гемоглобином (10-4 моль/л и 10-5 моль/л соответственно).
Сдвиг спектра люминесценции раствора красителя и гемоглобина, полученный
на 24 часа позже первого эксперимента, свидетельствовал бы о взаимодействии
молекул красителя с молекулами гемоглобина.
Рисунок 26 - Спектры люминесценции растворов родамина 6G с добавлением гемоглобина с разницей
в 24 часа
Рисунок 27 - Спектр люминесценции чистого раствора родамина 6G
На рисунке 26 показано временное изменение спектров люминесценции водных
растворов гемоглобина и красителя родамина 6G. В сравнение на рисунке 27 приводится спектр люминесценции
чистого раствора родамина 6G.
Сдвига пика спектра люминесценции не наблюдается. Мы предполагаем, что снижение
интенсивности люминесценции растворов происходит за счет выгорания красителя
под действием лазерного излучения.
Рисунок 28 - Спектры люминесценции растворов эозина G с добавлением гемоглобина с разницей
в 24 часа
Рисунок 29 - Спектр люминесценции чистого раствора эозина 6G
Как видно из рисунков 28 и 29 сдвига пиков люминесценции у красителя
эозина G при добавлении гемоглобина и с
течением времени не наблюдается. Происходит только снижение интенсивности
люминесценции за счет выгорания красителя в растворах под действием лазерного
излучения.
Рисунок 30 - Спектры люминесценции растворов эритрозина с добавлением
гемоглобина с разницей в 24 часа
Рисунок 31 - Спектр люминесценции чистого раствора эозина 6G
Представленные на рисунке 30 и 31 спектры люминесценции свидетельствуют
об уменьшении интенсивности люминесценции растворов с течением времени и с
добавление к раствору гемоглобина. Также сделано предположение, что происходит
это за счет выгорания красителя под действием лазерного излучения. Процессы
взаимодействия гемоглобина с красителем достаточно длительные, требуется время
для образования некого комплекса.
.3 Статистический анализ люминесценции пористых образцов, окрашенных
раствором красителей и гемоглобина
гемоглобин кислород люминесценция абсорбционный
Для дальнейшего исследования взаимодействия красителей с гемоглобином
было решено провести серию люминесцентных экспериментов с пористыми образцами
(силикагелем), окрашенными раствором красителей и гемоглобина в различных
концентрациях (10-4, 10-3 моль/л и 10-5 моль/л
соответственно). Окрашивание проводилось в течение 1-1,5 минут путем помещение
выбранного сухого образца в заранее приготовленный раствор. Эксперимент
проводился на установке, описанной в 2.1, без откачки кислорода. Целью данного
эксперимента являлось выявление влияния молекул гемоглобина на изменение пика
люминесценции окрашенных пористых образцов.
Для каждого из растворов красителя с гемоглобином были подготовлены
несколько образцов для сбора статистических данных по эксперименту с целью
нахождения среднего значения люминесценции, дисперсии и истинного значения.
Рисунок 32 - Спектр люминесценции образцов, окрашенных раствором родамина
6G (С=10-3 моль/л) и
гемоглобина (10-5 моль/л) при освещении зеленым лазером (534 нм)
Рисунок 33 - Спектр люминесценции образцов, окрашенных раствором родамина
6G (С=10-4 моль/л) и
гемоглобина (10-5 моль/л) при освещении зеленым лазером (532 нм)
Рисунок 33 - Спектр люминесценции образцов, окрашенных раствором эозина G (С=10-3 моль/л) и
гемоглобина (10-5 моль/л) при освещении зеленым лазером (532 нм)
Рисунок 35 - Спектр люминесценции образцов, окрашенных раствором эозина G (С=10-4 моль/л) и
гемоглобина (10-5 моль/л) при освещении зеленым лазером (532 нм)
Рисунок 36 - Спектр люминесценции образцов, окрашенных раствором
эритрозина (С=10-3 моль/л) и гемоглобина (10-5 моль/л)
при освещении зеленым лазером (532 нм)
Рисунок 37 - Спектр люминесценции образцов, окрашенных раствором
эритрозина (С=10-4 моль/л) и гемоглобина (10-5 моль/л)
при освещении зеленым лазером (532 нм)
Также был проведен ряд таких же экспериментов, но с воздействием синего
лазера
(λ=445 нм).
Рисунок 38 - Спектр люминесценции образцов, окрашенных раствором родамина
6G (С=10-3 моль/л) и
гемоглобина (10-5 моль/л) при освещении синим лазером (445 нм)
Рисунок 39 - Спектр люминесценции образцов, окрашенных раствором родамина
6G (С=10-4 моль/л) и
гемоглобина (10-5 моль/л) при освещении синим лазером (445 нм)
Рисунок 40 - Спектр люминесценции образцов, окрашенных раствором эозина G (С=10-3 моль/л) и
гемоглобина (10-5 моль/л) при освещении синим лазером (445 нм)
Рисунок 41 - Спектр люминесценции образцов, окрашенных раствором эозина G (С=10-4 моль/л) и
гемоглобина (10-5 моль/л) при освещении синим лазером (445 нм)
Рисунок 42 - Спектр люминесценции образцов, окрашенных раствором
эритрозина (С=10-3 моль/л) и гемоглобина (10-5 моль/л)
при освещении синим лазером (445 нм)
Рисунок 43 - Спектр люминесценции образцов, окрашенных раствором
эритрозина (С=10-4 моль/л) и гемоглобина (10-5 моль/л)
при освещении синим лазером (445 нм)
Представленные на рисунках 32 - 43 спектры люминесценции образцов,
окрашенных различными красителями с различными концентрациями с добавлением в
раствор гемоглобина, говорят о том, что интенсивность люминесценции понижается
при уменьшении концентрации красителя в исследуемом растворе.
По полученным данным однозначно можно судить о наличии взаимодействия
молекул красителей с молекулами гемоглобина в пористых средах.
3.4
Люминесцентный эксперимент с пористыми образцами, окрашенными раствором
красителей и гемоглобина с откачкой воздуха
Далее была проведена серия таких же экспериментов, с участием вакуумного
насоса, то есть с откачкой воздуха из образцов. Целью данного эксперимента
являлось выяснение степени влияния молекулярного кислорода, содержащегося в
гемоглобине, на интенсивность люминесценции красителей.
Рисунок 44 - Зависимость спектра люминесценции пористого образца,
окрашенного раствором родамина 6G
(С=10-3 моль/л) с гемоглобином от давления в кювете с образцом
Рисунок 45 - Зависимость спектра люминесценции пористого образца,
окрашенного раствором родамина 6G
(С=10-4 моль/л) с гемоглобином от давления в кювете с образцом
Рисунок 46 - Зависимость спектра люминесценции пористого образца,
окрашенного раствором эозина G
(С=10-3 моль/л) с гемоглобином от давления в кювете с образцом
Рисунок 47 - Зависимость спектра люминесценции пористого образца,
окрашенного раствором эозина G
(С=10-4 моль/л) с гемоглобином от давления в кювете с образцом
Рисунок 48 - Зависимость спектра люминесценции пористого образца, окрашенного
раствором эритрозина (С=10-3 моль/л) с гемоглобином от давления в
кювете с образцом
Рисунок 49 - Зависимость спектра люминесценции пористого образца,
окрашенного раствором эритрозина (С=10-4 моль/л) с гемоглобином от
давления в кювете с образцом
Из рисунков 44 - 49 видно, что при откачке воздуха из кюветы с образцом и
снижении давления до 1 мбар происходит увеличение интенсивности люминесценции
красителя. Концентрация родамина 6G 10-3 и 10-4 моль/л, концентрация гемоглобина - 10-5
моль/л.
Так как в данном эксперименте у всех исследуемых красителей в разных
концентрациях обнаружена идентичная зависимость спектра люминесценции от
давления в кювете с образцом, можно сделать утверждение о том, что молекулы
красителей взаимодействуют с молекулами гемоглобина.
3.5
Кинетический эксперимент с пленками силикагеля, окрашенного растворами
красителей с гемоглобином и покрытого ПВБ
После получения данных о зависимости люминесценции пористых образцов,
окрашенных раствором красителей и гемоглобина, от давления в кювете с образцом
было принято решение исследовать зависимость замедленной флуоресценции твердых
растворов красителей с гемоглобином от давления в кювете с образцом.
Эксперимент проводился на установке, описанной в 2.2, пленки с раздробленным
силикагелем заливались по технологии, описанной в 2.6. В качестве красителей
использовались эозин G,
эритрозин и родамин 6G в
концентрации 10-3 моль/л каждый. Концентрация гемоглобина составляла
10-5 моль/л.
Рисунок 50 - Зависимость сигнала замедленной флуоресценции эритрозина от
давления в кювете с образцом
Таблица 3.1 - Точки максимума при различных значениях давления для
красителя эритрозина
|
P, мбар
|
Тmax
|
|
5,0
|
1,49
|
|
6,4
|
1,43
|
|
7,5
|
1,3
|
|
8,6
|
1,07
|
|
9,7
|
1,0
|
|
11
|
0,86
|
|
12
|
0,8
|
|
15,6
|
0,72
|
|
20
|
0,54
|
Рисунок 51 - Зависимость сигнала замедленной флуоресценции эозина G от давления в кювете с образцом
Таблица 3.2 - Точки максимума при различных значениях давления для
красителя эозина G
|
P, мбарТmax
|
|
|
5,0
|
1,17
|
|
5,6
|
1,1
|
|
7,6
|
1,11
|
|
8,6
|
0,93
|
|
9,6
|
0,9
|
|
11
|
0,71
|
Рисунок 52 - Зависимость сигнала замедленной флуоресценции родамина 6G от давления в кювете с образцом
Таблица 3.3 - Точки максимума при различных значениях давления для
красителя родамина 6G
|
P, мбарТmax
|
|
|
5,4
|
0,81
|
|
5,9
|
0,76
|
|
6,9
|
0,73
|
|
7,9
|
0,73
|
|
9
|
0,63
|
|
15
|
0,57
|
Представленные на рисунках 50 - 52 кинетики замедленной флуоресценции
различных красителей наглядно демонстрируют, что при минимальных концентрациях
кислорода наблюдаются максимумы интенсивности сигнала. Кривые имеют ярко
выраженный горб, с последующим спадом интенсивности. Кроме интенсивности по
графикам можно наблюдать, что сдвигается время накопления на максимум.
Основные результаты и выводы
В рамках данной дипломной работы было проведено исследование
взаимодействия молекул красителя с молекулами гемоглобина. В частности:
В результате взаимодействия красителей с гемоглобином происходит снижение
интенсивности люминесценции и снижение пиков поглощения растворов на 25%.
Влияние пористых структур и концентраций кислорода на люминесценцию
растворов красителей и гемоглобина приводит к усилению люминесценции до 30%.
Наблюдается высокая зависимость интенсивности замедленной флуоресценции
от концентрации кислорода в кювете с пленками пористых сред, окрашенных
раствором красителя и гемоглобина.
Результаты исследований, проведенных в рамках данной работы, позволяют
сделать предположение о том, что молекулы красителей взаимодействуют с
молекулами гемоглобина в растворах и пористых средах, окрашенных раствором
красителей и гемоглобина, а также параметры пористых сред оказывают влияние на
характер взаимодействия.
Заключение
В результате проведенных экспериментов была выделена зависимость
люминесценции от концентрации кислорода в растворах красителей с гемоглобином
или пористых образцах, окрашенных растворами красителей с гемоглобином.
Полученные исследования помогут тщательнее изучить влияние молекулярного
кислорода на гемоглобин крови. Результаты данных исследований можно использовать
для диагностики и лечения, для изучения отдельных органов человека и животных.
Необходимо продолжать исследования в данной области, в силу важности
кислорода в процессах жизнедеятельности всего организма.
В заключение хочу выразить свою благодарность Центру лазерной и
информационной биофизики ОГУ за консультацию и помощь в проведении
экспериментальных исследований моей выпускной квалификационной работы.
Список использованных источников
Биологические структуры и функции на молекулярном уровне:
сб.науч.тр. / АН СССР. - М.: изд-во АнСССР, 1962. - 124 с.
Лауреаты Нобелевской премии: энциклопедия. - М.: Прогресс,
1992. - 256 с.
Перуц, М. Молекулярный механизм дыхания / М. Перуц // Наука и
человечество. - М.: Знание, 1966. - С. 50-59, С. - 85-86.
Скулачев, В.П. Кислород в живой клетке: добро или зло / В.П.
Скулачев. - М. Биология, 199. - 312 с.
Онлайн - справочник химических элементов [Электронный
ресурс]. - Режим доступа: http://webelements.narod.ru/elements/O.htm.
Сайт о дыхании. [Электронный ресурс] -
Режим доступа: http://www.chakrachka.ru/dyhanie/theory/kislorod.htm.
Чарный, А.М. Патофизиология гипоксических состояний / А.М.
Чарный. - М.: Медгиз, 1961. - 342 с.
Кучеренко, М.Г. Изменение кинетики аннигиляционной
люминесценции красителей в полимерах под действием лазерного импульса / М.Г.
Кучеренко, М.П. Мельник, Г.М. Кецле, С.Н. Летута // Оптика и спектроскопия. -
1995. - №4. - С. 649-653.
Bolton, P.H., Kenner,
R.D., Khan, A.U. // J. Chem. Phys. 1972. - V. 57. - №12. - Р. 5604-5605.
Кецле, Г.А., Кучеренко, М.Г., Якупов, Р.М. // Оптика и
спектроскопия. - 1989. - Т. 67. - В. 5. - С. 1090-1094.
. Кучеренко, М.Г., Мельник, М.П., Якупов, Р.М. // Известия АН
СССР. Сер. Физ. 1990. - Т. 54. - №3. - С. 489-495.
Кецле, Г.М., Кучеренко, М.Г., Якупов, Р.М. // Оптика и спектроскопия.
- 1989. - Т. 67. - В. 5. - С. 1090-1094.
Кецле, Г.А., Левшин, Л.В., Летута, С.Н. // Оптика и
спектроскопия. - 1990. - Т. - 68. - В. 2. - С. 334.
Кучеренко, М.Г. Селективное лазерное усиление флуктуаций
скорости реакций / Кучеренко, М.Г., Мельник М.П., Кецле, Г.А., Летута, С.Н. //
Известия АН России. Сер. Физ. - 1993. - Т. 57. - №12. - С. 175-180.
Википедия - свободная энциклопедия. [Электронный ресурс] -
Режим доступа: http://ru.wikipedia.org/wiki/Гемоглобин.
Шайтан, К.В. Диффузия лигандов в белках / К.В. Шайтан //
Соросовский образовательный журнал. - 2000. - №6. - С. 8-13.
Волькенштейн, М.В. Биофизика: учеб. руководство / М.В.
Волькенштейн. - М.: Наука, 1988. - 592 с.
Шайтан, К.В. Диффузия лигандов в белках / К.В. Шайтан //
Соросовский образовательный журнал. - 2000. - №6. - С. 13-20.
Шайтан, К.В. К теории миграции лигандов в биомакромолекулах /
К.В. Шайтан, И.В. Упоров, А.Б. Рубин // Молекулярная Биология. - 1985. - Т. 19.
- С. 742-750.
Ягтман, Д.Р. Силикагели / Д.Р. Ягтман. - М.: Химия, 2012. -
472 с.
Кельцев, Н.В. Основы адсорбционной техники / Н.В. Кельцев. -
М., 1984. - 534 с.
Неймарк, И.Е. Силикагель, его получение, свойства и
применение / И.Е. Неймарк, Р.Ю. Шейнфайн. - М.: Химия, 1972. - 200 с.
Механика жидкости и газа // Вестник Нижегородского
университета им. Н.И.Лобачевскогою. - 2011 - №4 (3). - С.777-778.
Головина, А.П. Химический люминесцентный анализ
неорганических веществ / А.П. Головина, Л.В. Левшин. - М.: Химия, 1978. - 248
с.
Левшин, В.Л. Фотолюминесценция жидких и твердых веществ. -
М., 1951. - 378 с.
Асимов, М.А. Стимулирование аэробного метаболизма клеток
низкоинтенсивным лазерным излучением / М.М. Асимов, Р.М. Асимов, А.Н. Рубинов,
С.А. Мамилов, Ю.С. Плаксий // Лазерная медицина. - 2007. - Т. 11. - В. 2. - С.
53.
27 Sychra, V. Atomic fluorescence spectroscopy / V.
Sychra, V. Svoboda, I. Rubeska. - London: Van Nostrand Reinhold co., 1975. -
379 р.
28 Левшин, В.Л. Труды ФИАН. - 1963. - Т 23. - С. 64
Лосев, Н.Ф. Количественный рентгеноспектральный
флуоресцентный анализ / Н.Ф. Лосев. - М.: Наука, 1969. - 366 с.
Верещагин, И.К. Электролюминесценция кристаллов /
И.К.Верещагин. - М.: Наука, 1974. - 279 с.
Вавилов, С.И. Сочинения: в 5 т. / С.И. Вавилов. - М.:
Издательство АН СССР, 1954. - Т. 1. - 344 с.
Антонов - Романовекий, В.В. Кинетика фотолюминесценции
кристаллофосфоров / В.В. Антонов-Романовекий. - М.: Наука, 1966. - 125 с.
33 Montero, E. Spectral pH dependence of erythrosine
in sol-gel silica coating and buffered solutions / E. Montero, M.A. Garcia,
M.A. Villegas. J.Llopis. - 2008. - V. 47. - Р. 1-6.
Pravinata, L.C. Erythrosin B Phosphorescence Monitors
Molecular Mobility and Dynamic Site Heterogeneity in Amorphous Sucrose / Linda
C. Pravinata; Yumin You // Biophysical Journal. - 2005. - V. 88. - Р. 3551-3561.
